以下是幾種常見用于熒光 PCR 試劑的染料及其原理：

一、SYBR Green I

原理：SYBR Green I 是一種能與雙鏈 DNA 小溝特異性結合的熒光染料。在游離狀態(tài)下，它的熒光信號相對較弱，而當 PCR 反應進行，隨著引物延伸，新的雙鏈 DNA 不斷合成，SYBR Green I 就會結合到雙鏈 DNA 上，熒光強度會大大增強，通過檢測熒光信號的變化就能實時監(jiān)測 PCR 產物量的增加情況。其激發(fā)波長通常在 497nm 左右，發(fā)射波長在 520nm 左右呈現(xiàn)綠色熒光。不過，它的缺點是特異性稍差，因為只要是雙鏈 DNA 它都會結合并產生熒光信號，所以可能會受到引物二聚體等非特異性雙鏈 DNA 的干擾，在結果分析時需要通過熔解曲線分析等手段進一步區(qū)分特異產物和非特異產物。

二、TaqMan 探針

原理：TaqMan 探針是一種寡核苷酸探針，其 5’端標記有報告熒光基團（比如 FAM 等常見熒光基團），3’端標記有淬滅熒光基團（如 TAMRA 等）。在完整的探針狀態(tài)下，由于熒光共振能量轉移（FRET）效應，報告熒光基團發(fā)出的熒光會被淬滅熒光基團吸收，使得檢測不到報告熒光基團的熒光信號。當 PCR 反應進行到延伸階段，Taq DNA 聚合酶具有 5’→3’外切酶活性，會沿著模板鏈合成新鏈的同時，將與模板鏈互補結合的 TaqMan 探針從 5’端逐步水解切斷，使得報告熒光基團和淬滅熒光基團分離，F(xiàn)RET 效應消失，報告熒光基團就能發(fā)出熒光，熒光信號強度就會隨著 PCR 循環(huán)次數(shù)增加而增強，從而實現(xiàn)對目標 DNA 序列擴增的實時監(jiān)測。

三、分子信標（Molecular Beacon）

原理：分子信標是一種呈發(fā)夾結構的寡核苷酸探針，其環(huán)狀部分是與目標 DNA 序列互補的識別序列，兩端的臂部序列互補配對形成莖干結構。在自由狀態(tài)下，由于兩端的熒光基團（5’端標記報告熒光基團，如 FAM 等，3’端標記淬滅熒光基團，如 DABCYL 等）距離很近，同樣基于 FRET 效應，報告熒光基團的熒光被淬滅。當 PCR 反應體系中有目標 DNA 存在時，分子信標會與目標 DNA 序列特異性結合，莖干結構打開，熒光基團和淬滅基團分離，報告熒光基團的熒光得以釋放，通過檢測熒光信號變化來反映目標 DNA 的有無及含量變化，并且其特異性高，對單堿基錯配也有較好的識別能力。

四、蝎形引物（Scorpion Primer）

原理：蝎形引物由一個常規(guī)引物和一個發(fā)夾結構的探針部分組成，發(fā)夾結構的環(huán)部是與 PCR 擴增產物特異性互補的序列，其 5’端標記有報告熒光基團，3’端連接有淬滅熒光基團，且在莖干部分還有一段能與引物延伸產物互補的序列。在 PCR 反應初期，引物參與延伸反應合成新鏈，當新鏈合成到一定程度后，蝎形引物的探針部分會與新合成鏈中的互補序列結合，形成分子內雜交，使得發(fā)夾結構打開，熒光基團和淬滅基團分離，熒光信號產生并隨著 PCR 循環(huán)次數(shù)增多而增強，從而實現(xiàn)對目標 DNA 的實時檢測，這種方式將引物和探針功能結合，有助于提高檢測的特異性和靈敏度。

五、熒光共振能量轉移（FRET）雜交探針

原理：通常使用兩條寡核苷酸探針，一條探針的 5’端標記有供體熒光基團（如 fluorescein 等），另一條探針的 3’端標記有受體熒光基團（如 Cy5 等）。在溶液中，兩條探針分別獨立存在時，供體熒光基團在激發(fā)光激發(fā)下發(fā)出的熒光能被檢測到。當兩條探針同時與目標 DNA 序列特異性結合，且兩條探針之間的距離合適（一般在 10 - 100 ? 之間）時，就會發(fā)生 FRET 現(xiàn)象，供體熒光基團將能量傳遞給受體熒光基團，使得受體熒光基團發(fā)出特征性熒光，通過檢測受體熒光基團的熒光信號變化來對目標 DNA 進行定性和定量分析，這種方法特異性也較好，對檢測復雜樣本中的目標序列有優(yōu)勢。

不同的熒光染料或探針有著各自的特點和適用場景，在實際的熒光 PCR 實驗中可以根據具體需求來選擇應用。